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动物
小鼠

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Thermal conditioned cabinet for TGR (for USA 220/240 Volt US plug)

产品代码:35580-US
产品类别: 疼痛与炎症

TGR可以清晰地区分温度依赖性表型或温度依赖性药物效果。

TGR可记录和分析小鼠的热偏好/回避行为,可研究神经性疼痛、外周神经病变、进行温度敏感性和不敏感性评估的基础研究、开展表型鉴定和筛选药物。

摄像头能追踪在TGR自由活动的小鼠,不需要用户干预即可收集小鼠在每个温度区(12个重复区域)内的停留时间和其他参数,例如首选温度区。

小鼠可在环形跑道上自由移动,从而避免了小鼠在长方形设备中习惯待在角落的刻板行为。

TGR2.0经济有效、无偏差。在广泛的热刺激实验中,数据可重复性强。

TGR新版本设计也适用于身附电缆的实验动物,例如光遗传学、电生理学和其他需要使用导线的技术。

型号
大多数 Ugo Basile 产品可以添加延长保修。您可以在每个产品的订购信息部分找到此信息。

背景

  • 温度感受器(例如瞬时型感受器,TRP,通道)和细胞和分子机制的温度感受器通常是神经性疼痛、外周神经病变和温度偏好的深入研究对象。
  • 新颖的环形热梯度测试能更好地研究热偏好。该测试还解决和避免了传统线性设备(实验对象自由度低、热选择有限、无法辨别探索行为、实验偏差)的局限性。
  • TGR是基于论文《使用新型自动环形梯度测试对小鼠进行全面的热偏好表型鉴定》研发而来。
  • TGR可以清晰地区分温度依赖性表型或药物效果。相较于其他技术(例如线性走廊、二选一温度偏好),TGR的优势在2024年的论文《用于分析涉及TRP通道的温度依赖性行为的小鼠热梯度环》(T. Ujisawa, J. Lei, M. Kashio, M. Tominaga, 2024, 《生理科学杂志》)中有详细描述。

设备新颖,数据无偏差,成本效益高

  • TGR的内径为45厘米,外径为57厘米,高度为24厘米。
  • TGR上装有摄像头,包括一个红外摄像头和一个红外传输内壁。
  • 在TGR中,小鼠可以在环形跑道上自由移动,能避免小鼠在长方形设备中习惯待在角落的刻板行为。
  • 通过视频追踪,获得行为数据,还能录制视频,然后由软件自动分析“时长”、“移动距离”或“速度”。
  • ““偏好温度”是区域温度根据动物所停留时间百分比的加权平均值,并自动计算超过该温度的时长百分比。

测量参数分析

  • 热区占用率:在某一区域花费的时间百分比。
  • 区域进入次数:进入每个区域的次数。
  • 偏好温度:加权偏好温度。
  • ““偏好温度”是区域温度根据动物所停留时间百分比的加权平均值,并自动计算超过该温度的时长百分比。
  • 累计距离:每个区域或整个设备的累计距离。
  • 环内位置坐标: 通过热图可视化小鼠在环中的行为。

现在也适用于身附电缆的实验动物

  • 新的TGR设计保留了旧版本的所有优点,同时也允许使用身附电缆的实验动物进行光遗传学或电生理学实验。

特点

优势

全新的圆形设计,内径45cm,外径57cm

重复值,无边界效应,无空间提示

设计新颖:装有旋转支架,不妨碍身负电缆的动物 允许进行关于身负电缆动物的实验,如光遗传学、电生理学等

环形铝制跑道由热绝缘材料制成

比以往方法更灵敏:无偏差,数据可重复

加热器和冷却器的位置相互对立,因此温度梯度对称

梯度设置优于双板选择设计

每侧12个区(镜像),每个40cm²

温度Δ按12个区分布均匀(在方法论文中温度为15°C-40°C=每区2.27°C)

4个热电偶嵌入热偏好测试仪

可实时精确测量温度梯度

CCD摄像头(标准包裹中已包含CCD摄像头,并配有专用支架)和ANYmaze视频跟踪软件

自动记录动物长达60分钟的行为

系统包含4个双光源(可见光/红外光) 可理想的跟踪动物行为:即使在黑暗中也能清晰观察
控制环境温度 提高温度精度,避免实验室温度波动

一般参数

控制

加热/冷却单元前面板上可发出控制命令

预设温度显示

热单元前面板上有LCD显示屏

检测

通过整合的USB摄像头,使用ANY-Maze TGR专用协议检测

声噪

68 分贝

电源要求

通用输入85-264 VAC,50-60Hz,最大400W

通信接口 集成4端口USB集线器

 

操作

温度范围

加热板:20°C至65°C

加热/冷却板:4°C至65°C

精度 1°C
温度反馈 通过4个热电偶进行温度反馈。电热偶由ANYmaze实时监测
红外光强度 通过带刻度的电位器设置
可见光强度 通过带刻度的电位器设置

 

物理规格

内径 45 cm
外径 57,5 cm
走廊宽度 6 cm

墙高标准

15 cm

可选墙高 25 cm

尺寸

76x60x60(h)cm

重量

49.5 Kg

运输重量

69.5 Kg

包装尺寸

120x80x70(h)cm(带托盘的防火木箱)

 

保修

保修时长 35530 享有 12 个月的保修期 + 产品注册后 12 个月保修期
UB-Care 可以选择增加额外12个月或24个月的UB-Care服务

“目前,有许多文献量化小鼠正常温度敏感性、过敏反应、痛觉敏感性和温度偏好/回避行为,但现行文献结果相互矛盾。


有些文献只捕捉到有限的温度体验范围,有些文献则受到实验者偏见的影响,或者没有充分考虑离子通道对温度感知的贡献,因为对于小鼠而言,对温度偏好发生细微变化的情况下,可能不会明显地改变行为,或者可能被混杂因素所掩盖,因此设备需要具有高度灵敏性。


为了克服当前困难,我们设计了一种新型的自动化设备,为动物提供了高度自由选择权(即热选择),并消除了实验者偏见的影响。该设备是圆形跑道热梯度测试的代表。它能够区分动物的探索行为和热选择行为,并通过提供的重复值和消除边缘伪影来提高准确性。


该测试从热定义区域中提炼了大量参数,再从这些参数中提供离散信息,如偏好温度和分布偏态。


我们证明,通过揭示TRPM8-、TRPA1-和TRPM8/A1缺失小鼠表型的未被承认的细节,该测试能对转基因小鼠的温度敏感性进行越来越准确的表型分析。" 摘自 "Comprehensive thermal preference phenotyping in mice using a novel automated circular gradient assay (Touska et al. 2016)"。


其他科学家(如日本的M. Tominaga团队,意大利那不勒斯的R. Russo团队以及德国的Tegeder团队)展示了多项应用:对帕金森病和慢性疼痛、TRP敲除小鼠行为以及与TRP受体相互作用的候选分子测试。这些研究在多个治
疗领域具有重要的药理学潜力。


2024年发表的"Thermal gradient ring for analysis of temperature-dependent behaviors involving TRP channels in mice" 描述了TGR方法,并将其与当前的温度偏好测试法和回避法进行了对比。

35530 热偏好测试仪2.0

35530

热偏好测试仪(Zimmermann方法)包括加热和冷却元件、低高度迷宫墙(15cm)的圆形走廊、温度探头、USB摄像头,适用于身负缆线和无缆线小鼠。但是热偏好测试仪2.0未包括(需要购买)ANY-maze软件,可选择TGR限量版或完整版。

 

软件(必选一项)

60000-TG ANY-maze软件,TGR专用限量版(仅适用于热偏好测试仪测试)
60000 ANY-Maze软件完整版(可用于热偏好测试仪和所有其他需要ANY-Maze的行为测试)

 

可选配件

35580-US

热调节柜,适用于2台热偏好测试仪(美国220/240伏美式插头)。温度范围为-10°C到100°C

35580-EU

热调节柜,适用于2台TGR设备(欧洲220/240伏欧式插头)。温度范围从-10°C到100°C

35530-003 热偏好测试仪25cm高迷宫墙

 

保修

保修时长 35530产品包含12个月保修,产品注册后再延长12个月
35530-UBC12 UB Care 12 额外硬件保修延长12个月(适用于SKU 35530)
35530-UBC24 UB Care 24 额外硬件保修延长24个月(适用于SKU 35530)

M. Tominaga, T. Ujisawa, J. Lei, M. Kashio, 2024, "Thermal gradient ring for analysis of temperature-dependent behaviors involving TRP channels in mice", The Journal of Physiological Sciences

 

M. Tominaga, J. Lei, R. U. Yoshimoto, T. Matsui, M. Amagai, M. A. Kido, 2023, “Involvement of skin TRPV3 in temperature detection regulated by TMEM79 in mice”, Nature Communications

 

L. Valek, B. Ngoc Tran, I. Tegeder, 2022, "Cold avoidance and heat pain hypersensitivity in neuronal nucleoredoxin knockout mice", Elsevier

 

M. Tominaga, S. Sasajima, M. Kondo, N. Ohno, T. Ujisawa, M. Motegi, T. Hayami, S. Asano, E. Asano Hayami, H. Nakai Shimoda, R. Inoue, Y. Yamada, E. Miura Yura, Y. Morishita, T. Himeno, S. Tsunekawa, Y. Kato, J. Nakamura, H. Kamiya and 2022, "Thermal gradient ring reveals thermosensory changes in diabetic peripheral neuropathy in mice", Nature

 

Y. Xue, M. Kremer, M.del Mar Muniz Moreno, C. Chidiac, R. Lorentz, M.C. Birling, M. Barrot, Y. Herault and C. Gaveriaux-Ruff, 2022, "The Human SCN9AR185H Point Mutation Induces Pain Hypersensitivity and Spontaneous Pain in Mice", Frontiers in Molecular Neuroscience

 

T. Ujisawa, S. Sasajima, M. Kashio and M. Tominaga, 2022, "Thermal gradient ring reveals different temperature-dependent behaviors in mice lacking thermosensitive TRP channels", The Journal of Physiological Sciences

 

L. Valek, B. Tran, A. Wilken-Schmitz, S. Trautmann, J. Heidler, T. Schmid, B. Brüne, D. Thomas, T. Deller, G. Geisslinger, G. Auburger, I. Tegeder, 2021, "Prodromal sensory neuropathy in Pink1−/−SNCAA53T double mutant Parkinson mice", Neuropathology and Applied Neurobiology

 

A. Bertamino, C. Ostacolo, A. Medina, V. Di Sarno, G. Lauro, T. Ciaglia, V. Vestuto, G. Pepe, M. Giovanna Basilicata, S. Musella, G. Smaldone, C. Cristiano, S. Gonzalez-Rodriguez, A. Fernandez-Carvajal, G. Bifulco, P. Campiglia, I. Gomez-Monterrey and Roberto Russo, 2020, "Exploration of TRPM8 Binding Sites by β‑Carboline-Based Antagonists and Their In Vitro Characterization and In Vivo Analgesic Activities", Journal of Medical Chemistry

 

Z. Winter, P. Gruschwitz, S. Eger, F. Touska and K. Zimmermann, 2017, "Cold Temperature Encoding by Cutaneous TRPA1 and TRPM8-Carrying Fibers in the Mouse", Frontiers in Molecular Neuroscience

 

F. Touska Z. Winter, A. Mueller, V. Vlachova, J. Larsen and K. Zimmermann, 2016, "Comprehensive thermal preference phenotyping in mice using a novel automated circular gradient assay" Journal Temperature

 

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